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Kranick, Daniel ; Kranick, Daniel Sebastian: Identifizierung und Charakterisierung von CREM-Spleißvarianten im murinen und humanen Herzen. 2016
Inhalt
1 Einleitung
1.1 Herzinsuffizienz
1.2 Kardiales Remodelling und veränderte Genexpression bei Herzinsuffizienz
1.3 Transkriptionelle Regulation durch cAMP
1.3.1 Der cAMP-abhängige Signaltransduktionsweg
1.3.2 Die Familie der cAMP-abhängigen Transkriptionsfaktoren
1.3.3 CREM: cAMP responsive element modulator
1.3.3.1 Aufbau des CREM-Gens
1.3.3.2 CREM-Isoformen
1.3.3.3 Funktionen des Transkriptionsfaktors CREM
1.3.3.4 Funktion des Transkriptionsfaktors CREM im Herzen
2 Zentrale Fragestellungen
3 Material und Methoden
3.1 Vorgehensweise
3.2 Ausgangsmaterial
3.3 Identifikation der CREM-Spleißvarianten
3.3.1 Reverse-Transkriptase PCR
3.3.2 Polymerasekettenreaktion
3.3.3 5‘-Rapid Amplification of cDNA Ends-PCR
3.3.4 Agarosegelelektrophorese
3.3.5 Aufreinigung der cDNA aus Agarosegelen
3.3.6 Herstellung kompetenter Escherichia coli nach der Rubidiumchlorid-Methode
3.3.7 Klonierung der cDNA in einen prokaryotischen Expressionsvektor
3.3.8 Transformation der Plasmide in Escherichia coli
3.3.9 Bakterienkultur zur Vermehrung der Plasmide
3.3.10 Plasmidextraktion durch alkalische Lyse
3.3.11 Restriktionsverdaus zur Validerung der Inserts
3.3.12 Photometrische Bestimmung der DNA-Konzentration und Verdünnung
3.3.13 Sequenzierung der Spleißvarianten
3.4 Klonierung von CREM-Spleißvarianten in eukaryotische Expressionsvektoren
3.4.1 PCR Site-directed Mutagenesis der CREM-cDNA
3.4.2 Linearisierung des eukaryotischen Expressionsvektors
3.4.3 Aufreinigung der PCR Site-directed Mutagenesis und des linearisierten Vektors mit DNA Clean & Concentrator™-5
3.4.4 Restriktionsverdau und Aufreinigung der mutierten CREM-cDNA
3.4.5 Abschätzen von DNA-Konzentrationen auf Agarosegelen
3.4.6 Klonierung der CREM-Spleißvarianten in den eukaryotischen Expressionsvektor
3.4.7 Vermehrung der Vektoren in Escherichia coli mit anschließender Plasmidextraktion
3.4.8 Restriktionsverdau und Sequenzierung der Vektoren zur Verifikation des Inserts
3.5 Nachweis der CREM-Expression durch SDS-PAGE und Western Blot
3.5.1 Kultur und Transfektion von HEK293-Zellen
3.5.2 Aufbereitung der Zellen durch Sonifizieren
3.5.3 Proteinbestimmung nach Bradford
3.5.4 SDS-PAGE und Western-Blot
3.5.5 Darstellung der Proteine mit dem ChemiDocTM MP Imaging System
3.6 Funktionelle Charakterisierung von CREM-Spleißvarianten im Luciferase-Assay
3.6.1 Kultur und Transfektion von HEK293-Zellen
3.6.2 Stimulation der transfizierten HEK293-Zellen mit Forskolin
3.6.3 Luciferase-Reportergen-Analyse mit Mithras LB 940 Multimode Microplate Reader
3.7 Quantitative Analyse von CREM-Spleißvarianten durch quantitative-Real-Time-PCR
3.7.1 qPCR mit Hydrolyse-Sonden und dem LightCycler® 480II
3.7.2 Quantifizierung der Daten
4 Ergebnisse
4.1 Identifikation von CREM-Spleißvarianten
4.1.1 Identifizierte CREM-Spleißvarianten im Herzen der Maus
4.1.2 Identifizierte CREM-Spleißvarianten im Herzen des Menschen
4.1.3 Translation der CREM-Isoformen
4.2 Quantifizierung der CREM-Spleißvarianten
4.2.1 Isoformen im Herzen der Maus im physiologischen Zustand und unter Isoprenalinstimulation
4.2.2 Isoformen in nicht-insuffizienten, humanen Herzen und insuffizienten Herzen von DCM-Patienten
4.3 Luziferase-Reportergen-Analyse von CREM-Isoformen
5 Diskussion
5.1 Beschreibung der Spleißvarianten
5.1.1 Spleißvarianten, die ausgehend von P1/P5 transkribiert werden
5.1.1.1 Spleißvarianten, die eine Kinase Inducible Domain enthalten
5.1.1.2 Spleißvarianten ohne (vollständige) KID
5.1.1.3 Spleißvarianten mit transaktivatorischer Domäne
5.1.2 Spleißvariante, die ausgehend von P4 transkribiert wird
5.1.3 ICER-Spleißvarianten
5.1.4 smICER-Spleißvarianten
5.2 Ausblick
6 Zusammenfassung
7 Literaturverzeichnis
8 Abbildungsverzeichnis
9 Tabellenverzeichnis
10 Danksagung
11 Lebenslauf